《科學(xué)》:諾獎(jiǎng)得主解讀 CRISPR 的十年


  市場(chǎng)動(dòng)態(tài)     |      2023-03-13
摘要:隨著生物學(xué)走入“分子時(shí)代”,基因編輯工具成為有力的科研武器,尤其是簇狀規(guī)則間隔短回文重復(fù)序列(CRISPR)基因編輯技術(shù)的出現(xiàn),為基礎(chǔ)和應(yīng)用生物學(xué)研究帶來了巨大的變革。
使用 CRISPR,我們能夠識(shí)別并快速地改變目標(biāo)基因、診斷疾病、預(yù)測(cè)個(gè)體的疾病易感性,應(yīng)用 CRISPR 的農(nóng)業(yè)產(chǎn)物已經(jīng)走進(jìn)現(xiàn)實(shí),CRISPR 邁出進(jìn)入臨床醫(yī)學(xué)的第一步已然不遠(yuǎn)……曾幾何時(shí),人類基因組測(cè)序需 5 年才能完成;如今,24 小時(shí)內(nèi)獲取完整序列已經(jīng)變得可行。
CRISPR 是一門年輕的技術(shù),它何以具有如此之大的能量?
近期,因開發(fā) CRISPR 基因編輯技術(shù)于2020年獲得諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)的 Jennifer Doudna 在《科學(xué)》雜志撰文[1],回顧了過去十年中 CRISPR 基因編輯的起源和應(yīng)用、當(dāng)前成果、局限性,并討論了未來的發(fā)展方向。就讓我們跟隨這篇文章一起來看看 CRISPR 的騰飛之旅。
CRISPR 的十年
圖1 CRISPR 的十年
改變生物學(xué)的技術(shù)
1987年,一篇論文首次將 CRISPR 帶入人類的視野[2]。CRISPR 是在微生物基因組中發(fā)現(xiàn)的一組規(guī)律重復(fù)的基因序列,它常與編碼 CRIPSR 相關(guān)蛋白(Cas)的基因一同出現(xiàn)。有趣的是,這些短重復(fù)序列竟然與病毒中的部分序列匹配[3]。
原來,CRISPR 系統(tǒng)其實(shí)是微生物的一種自我防御系統(tǒng),通過 CRISPR 轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物識(shí)別、Cas 蛋白切割來破壞病毒的 DNA 或 RNA,以此防御病毒入侵[4]。而這一運(yùn)作系統(tǒng)的簡(jiǎn)單和精巧使其具有了成為基因編輯工具的可能。
目前使用最廣泛的是被認(rèn)為是第三代基因編輯技術(shù)的 CRISPR-Cas9 系統(tǒng),由攜帶的引導(dǎo) RNA(guide RNA)來識(shí)別序列,Cas9 蛋白(一種 RNA 指導(dǎo)的 DNA 內(nèi)切核酸酶)切割 DNA,因此可以廣泛地靶向不同的序列。通過改變 Cas9 蛋白活性位點(diǎn)的氨基酸,也可以僅切斷 DNA 單鏈或者僅結(jié)合不切割,由此實(shí)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄抑制、激活、沉默、上調(diào)等多種基因調(diào)控目的[5]。對(duì) Cas 蛋白的進(jìn)一步改造,也提供了單堿基編輯、染色質(zhì)修飾、序列插入、靶向 RNA 等多樣的應(yīng)用方向[6]。
微生物中的 CRISPR 自我防御系統(tǒng)和 CRISPR-Cas9 基因編輯系統(tǒng)
圖2 微生物中的 CRISPR 自我防御系統(tǒng)和 CRISPR-Cas9 基因編輯系統(tǒng)
CRISPR 技術(shù)的出現(xiàn)為多種疾病治療提供了基礎(chǔ),包括鐮狀細(xì)胞病(SCD)、乙型地中海貧血、轉(zhuǎn)甲狀腺素蛋白(TTR)淀粉樣變性、先天性眼病等遺傳疾病,乃至癌癥、艾滋病毒感染等常見病;CRISPR 技術(shù)已經(jīng)在農(nóng)作物和家畜育種方面取得成果,比如更耐熱應(yīng)激的奶牛(slick-coat cattle)及更有營(yíng)養(yǎng)的番茄;而在基礎(chǔ)研究上,CRISPR 作為有力的科研工具,加速了分子和細(xì)胞生物學(xué)領(lǐng)域的研究,在數(shù)千篇論文中起到了作用。
接下來,就讓我們來具體了解一下 CRISPR 這個(gè)優(yōu)秀的科研工具箱。
“萬能”工具箱
CRISPR 結(jié)構(gòu)精巧靈活、可塑性極強(qiáng),不同 CRISPR 體系具有多種功用,接下來我們選取其中使用較為廣泛的三類進(jìn)行介紹。
①基因敲除
基因敲除是 CRISPR 最主要的應(yīng)用之一,真核細(xì)胞中普遍使用 CRISPR-Cas9 系統(tǒng),由工程單導(dǎo) RNA(sgRNA)將 Cas9 核酸酶引導(dǎo)到目標(biāo)位點(diǎn),制造 DNA 雙鏈斷裂(DSB),由非同源末端連接(NHEJ)和同源定向修復(fù)(HDR)等內(nèi)源性修復(fù)途徑修復(fù)。
這種技術(shù)已經(jīng)廣泛應(yīng)用于基因敲除動(dòng)物模型的創(chuàng)建,由于繞過了傳統(tǒng)手段的復(fù)雜胚胎干細(xì)胞篩選過程,培育時(shí)間大大縮短,培育轉(zhuǎn)基因小鼠的時(shí)長(zhǎng)從 1 年縮短到了 4 周[7]。同時(shí),大多數(shù)哺乳動(dòng)物并沒有成熟的胚胎干細(xì)胞系,通過 CRISPR-Cas9 也能夠促進(jìn)新物種的動(dòng)物模型出現(xiàn)。
在生殖細(xì)胞編輯之外,CRISPR-Cas9 也可以用于體細(xì)胞編輯,這避免了部分基因全身敲除的致命影響,在特定場(chǎng)景下也更有利于模擬癌癥的演變和進(jìn)展以及確定癌癥治療的新策略[8]。
利用 CRISPR,研究者已經(jīng)制造了多種疾病的動(dòng)物模型,包括酪氨酸血癥、杜氏肌營(yíng)養(yǎng)不良、癌癥、骨質(zhì)疏松、亨廷頓舞蹈癥、肌萎縮型側(cè)索硬化癥、阿爾茨海默病和艾滋病等[9]。
CRISPR 敲除和 CRISPR 篩選的流程
圖3 CRISPR 敲除和 CRISPR 篩選的流程
② CRISPR 篩選
當(dāng)通過 CRISPR 并行執(zhí)行針對(duì)多個(gè)基因的遺傳改變,就是 CRISPR 篩選。由于靈活高效,CRISPR 可以方便地引入基因擾動(dòng),可以深入研究單個(gè)基因擾動(dòng)如何影響目標(biāo)細(xì)胞的功能,又或是在混合篩選中對(duì)數(shù)千個(gè)擾動(dòng)進(jìn)行高通量測(cè)序[10]。當(dāng) gRNA 文庫(kù)達(dá)到基因組規(guī)模,研究者可以輕易使用 CRISPR 來擾動(dòng)人類基因組中的每一個(gè)基因[11]。
在 CRISPR 敲除(CRISPR KO)篩選之外,CRISPR 干擾(CRISPRi)篩選和 CRISPR 激活(CRISPRa)篩選也是常用的可逆的控制基因表達(dá)的篩選方法[12];飽和基因組編輯(saturation genome editing)能夠產(chǎn)生所有可能的單核苷酸多態(tài)性(SNPs)用于功能篩選[13];后文會(huì)介紹的單堿基編輯技術(shù)能夠以更高效率引入點(diǎn)突變,或許會(huì)成為 CRISPR 篩選的新助力。
CRISPR 篩選已經(jīng)在類器官、動(dòng)物、植物等復(fù)雜模型中實(shí)際應(yīng)用,它目前是分析癌基因功能的常用方法,還可以用于識(shí)別各種癌癥驅(qū)動(dòng)因素和調(diào)節(jié)因素[10]。
結(jié)合其他技術(shù),CRISPR 篩選同樣可用于細(xì)胞表型篩選、腫瘤耐藥性篩選等等領(lǐng)域,比如 Procode、Perturb-ATAC、Perturb-seq 和 ECCITE-seq 等多組學(xué)篩選技術(shù)。
③單堿基編輯技術(shù)
單堿基編輯技術(shù)提供了一種在不切斷 DNA 雙鏈的情況下進(jìn)行基因編輯的新可能,這一方面可以產(chǎn)生精確的點(diǎn)突變,一方面無需復(fù)制模板且限制了多余的副產(chǎn)物。
單堿基編輯系統(tǒng)通常由不具有催化 DSB 活性的 dCas9、dCas12a、dCas13b 等 Cas 蛋白和堿基脫氨酶融合組成,sgRNA 將融合酶引導(dǎo)到目標(biāo)位點(diǎn),脫氨酶進(jìn)行化學(xué)修飾,通過細(xì)胞修復(fù)機(jī)制處理堿基不匹配。在過去的幾年里,DNA 和 RNA 單堿基編輯已經(jīng)實(shí)現(xiàn)了 C>T、A>G、C>G、A>I和C>U 轉(zhuǎn)換突變。
點(diǎn)突變是人類致病遺傳變異的主要類別,單堿基編輯技術(shù)為治療人類遺傳疾病鋪平了道路。單堿基編輯已經(jīng)在多種小鼠模型中表現(xiàn)出了糾正功能喪失突變的良好效果,例如體內(nèi)單堿基編輯糾正小鼠 Hutchinson-Gilford 早衰綜合征[14]。使用單堿基編輯技術(shù)治療家族性高膽固醇血癥的早期臨床試驗(yàn)已經(jīng)開始,近期將開展的還有針對(duì)鐮狀細(xì)胞病的臨床研究[15]。
單堿基編輯技術(shù)之一base-editing的原理
圖4 單堿基編輯技術(shù)之一base-editing的原理
CRISPR 進(jìn)化的方向
隨著 CRISPR 基因編輯技術(shù)進(jìn)入下一個(gè)十年,還有一些關(guān)鍵的問題需要解決,其中一個(gè)就是編輯的精度。這既指編輯目標(biāo)位點(diǎn)的特異性,也指編輯結(jié)果的準(zhǔn)確性。
為減少意外結(jié)合和切割導(dǎo)致的脫靶效應(yīng),研究者利用合理的設(shè)計(jì)開發(fā)了高保真Cas變體,例如SpCas9-HF1、evoCas9、HiFiCas9和 Cas9_R63A/Q768A 等變體,亦或是設(shè)計(jì)了優(yōu)化的導(dǎo)向方法,例如 E-Crisp、CasOFFinder、sgDesigner。近期,也有研究開發(fā)了機(jī)器學(xué)習(xí)工具來預(yù)測(cè)基因編輯結(jié)果,但目前尚未得到體內(nèi)研究的驗(yàn)證[16]。
基因編輯特異性和準(zhǔn)確性
圖5 基因編輯特異性和準(zhǔn)確性
傳統(tǒng)編輯中,DSB 后涉及 NHEJ 或 HDR 通路的修復(fù)(前者容易出錯(cuò),可能導(dǎo)致突變,后者雖更精確,但發(fā)生率非常低),這會(huì)導(dǎo)致一系列插入缺失突變(indels)。避免這個(gè)問題的其中一個(gè)思路就是提高 HDR 效率和/或抑制NHEJ,例如使用單鏈寡脫氧核苷酸模板[17]、通過控制細(xì)胞周期階段來促進(jìn) HDR [18]、使用位點(diǎn)特異性 Cas9 寡核苷酸偶聯(lián)物將 DNA 模板募集到目標(biāo)位點(diǎn)[19]。但在這些方法之下仍存在 DSB 相關(guān)的大量基因位點(diǎn)缺失和染色體重排風(fēng)險(xiǎn),可能導(dǎo)致基因組不穩(wěn)定。
避免產(chǎn)生DSB則是另一個(gè)思路,堿基編輯(base editing,BE)和引導(dǎo)編輯(prime editing,PE)是目前的主要方法。不過 BE 也存在旁觀者編輯的問題,當(dāng)編輯窗口中存在多個(gè)目標(biāo)堿基時(shí),BE 的編輯精度會(huì)大大降低[20]。Cas 蛋白識(shí)別特定原間隔序列鄰近基序(PAM),受此限制,縮小編輯窗口也存在一定困難,這還需要結(jié)合多種輔助策略來改善。PE 同樣不涉及 DSB,且能夠?qū)崿F(xiàn) DNA 序列的插入,但目前 PE 的編輯效率還比較低[21]。
引導(dǎo)編輯的原理
圖6 引導(dǎo)編輯的原理
限制 CRIPSR 應(yīng)用的另一個(gè)環(huán)節(jié)是 CRISPR 的遞送。目前在哺乳動(dòng)物系統(tǒng)中存在多種遞送方法,可以大致分為物理遞送、病毒遞送和基于合成材料的遞送。常用的物理方法包括微注射和電穿孔,傳遞效率高且劑量可控,但這局限于體外遞送;病毒遞送常用腺相關(guān)病毒(AAV)、腺病毒(AdVs)和慢病毒等載體,其中 AAV 在臨床研究中應(yīng)用較多,但病毒載體存在載量、免疫原性、制造成本等多種潛在問題;脂質(zhì)納米顆粒(LNPs)、陽離子聚合物、多肽和納米金(gold nanoparticles,GNPs)等合成材料載體通常較為安全可控,LNPs 是首次成功用于治療TTR淀粉樣變性的遞送載體[22]。
體內(nèi)環(huán)境對(duì) CRISPR 遞送具有多種阻礙,載體需避免降解、調(diào)理素作用、吞噬導(dǎo)致從血管滲出,有效穿過狹窄間隙,并在內(nèi)吞時(shí)釋放內(nèi)含物。CRISPR 治療人類疾病能夠發(fā)展到何種程度,很大程度上將取決于當(dāng)前遞送方法的改進(jìn)、新遞送方法的創(chuàng)建和設(shè)計(jì)更緊湊的 CRISPR 編輯系統(tǒng)。
CRISPR 遞送過程
圖7 CRISPR 遞送過程
結(jié)語
可編程基因編輯技術(shù)的出現(xiàn)為細(xì)胞和基因治療的應(yīng)用鋪平了道路。已有大量應(yīng)用 CRISPR 的臨床試驗(yàn)正在進(jìn)行,其中關(guān)于 SCD 的至少已有 8 項(xiàng)正在進(jìn)行或即將開始,預(yù)計(jì) 2023 年內(nèi) FDA 會(huì)啟動(dòng)至少一項(xiàng)療法的批準(zhǔn)[23]。隨著臨床應(yīng)用的擴(kuò)大,CRISPR 也有可能成為預(yù)防神經(jīng)退行性疾病和心血管疾病的一種手段[24]。
CIRSPR 也對(duì)農(nóng)業(yè)和畜牧業(yè)產(chǎn)生了深遠(yuǎn)的影響,CRISPR 編輯的食品已經(jīng)進(jìn)入市場(chǎng),包括營(yíng)養(yǎng)價(jià)值更高的番茄和兩種已獲批在日本銷售的魚類。CRISPR 精準(zhǔn)編輯的特點(diǎn)非常適合定向育種,可以同時(shí)敲除和激活不同的基因,例如給小麥引入抗病性的同時(shí)增加小麥的產(chǎn)量[25]。
CRISPR-Cas9 和 CRISPR-Cas12a 是目前應(yīng)用最廣的編輯系統(tǒng),已經(jīng)在全世界各地的實(shí)驗(yàn)室得到了廣泛的應(yīng)用。這加速了基礎(chǔ)研究的進(jìn)展,也倒推了 CRISPR 工具箱的擴(kuò)展。結(jié)合機(jī)器學(xué)習(xí)、活細(xì)胞成像、DNA 測(cè)序技術(shù), CRISPR 還能做到更多。
下一個(gè)十年,CIRSPR 還將繼續(xù)改變世界。
未來的 CRISPR
圖8 未來的 CRISPR
參考資料:
[1] Wang J Y, Doudna J A. CRISPR technology: A decade of genome editing is only the beginning[J]. Science, 2023, 379(6629): eadd8643.
[2] Y. Ishino, H. Shinagawa, K. Makino, M. Amemura, A. Nakata,Nucleotide sequence of the iap gene, responsible for alkaline phosphatase isozyme conversion in Escherichia coli, and identification of the gene product. J. Bacteriol. 169,5429–5433 (1987). doi: 10.1128/jb.169.12.5429-5433.1987;pmid: 3316184
[3] F. J. M. Mojica, C. Díez-Villase?or, J. García-Martínez, E. Soria,Intervening sequences of regularly spaced prokaryotic repeats derive from foreign genetic elements. J. Mol. Evol.60, 174–182 (2005). doi: 10.1007/s00239-004-0046-3;pmid: 15791728
[4] S. J. J. Brouns et al., Small CRISPR RNAs guide antiviral defense in prokaryotes. Science 321, 960–964 (2008).doi: 10.1126/science.1159689; pmid: 18703739
[5] L. S. Qi et al., Repurposing CRISPR as an RNA-guided platform for sequence-specific control of gene expression.Cell 152, 1173–1183 (2013). doi: 10.1016/j.cell.2013.02.022;pmid: 23452860
[6] J. Y. Wang, P. Pausch, J. A. Doudna, Structural biology of CRISPR-Cas immunity and genome editing enzymes.Nat. Rev. Microbiol. 20, 641–656 (2022). doi: 10.1038/s41579-022-00739-4; pmid: 35562427
[7] H. Yang, H. Wang, R. Jaenisch, Generating genetically modified mice using CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Nat. Protoc. 9, 1956–1968 (2014). doi: 10.1038/nprot.2014.134; pmid: 25058643
[8] H. Mou, Z. Kennedy, D. G. Anderson, H. Yin, W. Xue, Precision cancer mouse models through genome editing with CRISPRCas9. Genome Med. 7, 53 (2015). doi: 10.1186/s13073-015-0178-7; pmid: 26060510
[9] H. Lee, D. E. Yoon, K. Kim, Genome editing methods in animal models. Anim. Cells Syst. 24, 8–16 (2020). doi: 10.1080/19768354.2020.1726462; pmid: 32158611
[10] A. Katti, B. J. Diaz, C. M. Caragine, N. E. Sanjana, L. E. Dow,CRISPR in cancer biology and therapy. Nat. Rev. Cancer 22,259–279 (2022). doi: 10.1038/s41568-022-00441-w;pmid: 35194172
[11] N. E. Sanjana, O. Shalem, F. Zhang, Improved vectors and genome-wide libraries for CRISPR screening. Nat.Methods 11, 783–784 (2014). doi: 10.1038/nmeth.3047;pmid: 25075903
[12] L. Przybyla, L. A. Gilbert, A new era in functional genomics screens. Nat. Rev. Genet. 23, 89–103 (2022). doi: 10.1038/s41576-021-00409-w; pmid: 34545248
[13] G. M. Findlay et al., Accurate classification of BRCA1 variants with saturation genome editing. Nature 562, 217–222 (2018).doi: 10.1038/s41586-018-0461-z; pmid: 30209399
[14] L. W. Koblan et al., In vivo base editing rescues Hutchinson-Gilford progeria syndrome in mice. Nature 589, 608–614 (2021). doi: 10.1038/s41586-020-03086-7;pmid: 33408413
[15] K. Kingwell, Base editors hit the clinic. Nat. Rev. Drug Discov.21, 545–547 (2022). doi: 10.1038/d41573-022-00124-z;pmid: 35831515
[16] W. Chen et al., Massively parallel profiling and predictive modeling of the outcomes of CRISPR/Cas9-mediated doublestrand break repair. Nucleic Acids Res. 47, 7989–8003(2019). doi: 10.1093/nar/gkz487; pmid: 31165867
[17] C. D. Richardson, G. J. Ray, M. A. DeWitt, G. L. Curie,J. E. Corn, Enhancing homology-directed genome editing by catalytically active and inactive CRISPR-Cas9 using asymmetric donor DNA. Nat. Biotechnol. 34, 339–344(2016). doi: 10.1038/nbt.3481; pmid: 26789497
[18] A. Lomova et al., Improving gene editing outcomes in human hematopoietic stem and progenitor cells by temporal control of DNA repair. Stem Cells 37, 284–294 (2019).doi: 10.1002/stem.2935; pmid: 30372555
[19] X. Ling et al., Improving the efficiency of precise genome editing with site-specific Cas9-oligonucleotide conjugates.Sci. Adv. 6, eaaz0051 (2020). doi: 10.1126/sciadv.aaz0051;pmid: 32494588
[20] M. Arbab et al., Determinants of base editing outcomes from target library analysis and machine learning. Cell 182, 463–480.e30 (2020). doi: 10.1016/j.cell.2020.05.037; pmid: 32533916
[21]M. M. Hassan, G. Yuan, J.-G. Chen, G. A. Tuskan, X. Yang,Prime editing technology and its prospects for future applications in plant biology research. BioDesign Research 2020, 1–14 (2020). doi: 10.34133/2020/9350905
[22] J. D. Gillmore et al., CRISPR-Cas9 In vivo gene editing for transthyretin amyloidosis. N. Engl. J. Med. 385, 493–502(2021). doi: 10.1056/NEJMoa2107454; pmid: 34215024
[23] F. D. Urnov, The Cas9 hammer-and sickle: A challenge for genome editors. CRISPR J. 4, 6–13 (2021). doi: 10.1089/crispr.2021.29120.fur; pmid: 33616446
[24] K. Musunuru et al., In vivo CRISPR base editing of PCSK9 durably lowers cholesterol in primates. Nature 593,429–434 (2021). doi: 10.1038/s41586-021-03534-y;pmid: 34012082
[25] S. Li et al., Genome-edited powdery mildew resistance in wheat without growth penalties. Nature 602, 455–460(2022). doi: 10.1038/s41586-022-04395-9;pmid: 35140403

 

摘要:隨著生物學(xué)走入“分子時(shí)代”,基因編輯工具成為有力的科研武器,尤其是簇狀規(guī)則間隔短回文重復(fù)序列(CRISPR)基因編輯技術(shù)的出現(xiàn),為基礎(chǔ)和應(yīng)用生物學(xué)研究帶來了巨大的變革。
使用 CRISPR,我們能夠識(shí)別并快速地改變目標(biāo)基因、診斷疾病、預(yù)測(cè)個(gè)體的疾病易感性,應(yīng)用 CRISPR 的農(nóng)業(yè)產(chǎn)物已經(jīng)走進(jìn)現(xiàn)實(shí),CRISPR 邁出進(jìn)入臨床醫(yī)學(xué)的第一步已然不遠(yuǎn)……曾幾何時(shí),人類基因組測(cè)序需 5 年才能完成;如今,24 小時(shí)內(nèi)獲取完整序列已經(jīng)變得可行。
CRISPR 是一門年輕的技術(shù),它何以具有如此之大的能量?
近期,因開發(fā) CRISPR 基因編輯技術(shù)于2020年獲得諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)的 Jennifer Doudna 在《科學(xué)》雜志撰文[1],回顧了過去十年中 CRISPR 基因編輯的起源和應(yīng)用、當(dāng)前成果、局限性,并討論了未來的發(fā)展方向。就讓我們跟隨這篇文章一起來看看 CRISPR 的騰飛之旅。
CRISPR 的十年
圖1 CRISPR 的十年
改變生物學(xué)的技術(shù)
1987年,一篇論文首次將 CRISPR 帶入人類的視野[2]。CRISPR 是在微生物基因組中發(fā)現(xiàn)的一組規(guī)律重復(fù)的基因序列,它常與編碼 CRIPSR 相關(guān)蛋白(Cas)的基因一同出現(xiàn)。有趣的是,這些短重復(fù)序列竟然與病毒中的部分序列匹配[3]。
原來,CRISPR 系統(tǒng)其實(shí)是微生物的一種自我防御系統(tǒng),通過 CRISPR 轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物識(shí)別、Cas 蛋白切割來破壞病毒的 DNA 或 RNA,以此防御病毒入侵[4]。而這一運(yùn)作系統(tǒng)的簡(jiǎn)單和精巧使其具有了成為基因編輯工具的可能。
目前使用最廣泛的是被認(rèn)為是第三代基因編輯技術(shù)的 CRISPR-Cas9 系統(tǒng),由攜帶的引導(dǎo) RNA(guide RNA)來識(shí)別序列,Cas9 蛋白(一種 RNA 指導(dǎo)的 DNA 內(nèi)切核酸酶)切割 DNA,因此可以廣泛地靶向不同的序列。通過改變 Cas9 蛋白活性位點(diǎn)的氨基酸,也可以僅切斷 DNA 單鏈或者僅結(jié)合不切割,由此實(shí)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄抑制、激活、沉默、上調(diào)等多種基因調(diào)控目的[5]。對(duì) Cas 蛋白的進(jìn)一步改造,也提供了單堿基編輯、染色質(zhì)修飾、序列插入、靶向 RNA 等多樣的應(yīng)用方向[6]。
微生物中的 CRISPR 自我防御系統(tǒng)和 CRISPR-Cas9 基因編輯系統(tǒng)
圖2 微生物中的 CRISPR 自我防御系統(tǒng)和 CRISPR-Cas9 基因編輯系統(tǒng)
CRISPR 技術(shù)的出現(xiàn)為多種疾病治療提供了基礎(chǔ),包括鐮狀細(xì)胞病(SCD)、乙型地中海貧血、轉(zhuǎn)甲狀腺素蛋白(TTR)淀粉樣變性、先天性眼病等遺傳疾病,乃至癌癥、艾滋病毒感染等常見病;CRISPR 技術(shù)已經(jīng)在農(nóng)作物和家畜育種方面取得成果,比如更耐熱應(yīng)激的奶牛(slick-coat cattle)及更有營(yíng)養(yǎng)的番茄;而在基礎(chǔ)研究上,CRISPR 作為有力的科研工具,加速了分子和細(xì)胞生物學(xué)領(lǐng)域的研究,在數(shù)千篇論文中起到了作用。
接下來,就讓我們來具體了解一下 CRISPR 這個(gè)優(yōu)秀的科研工具箱。
“萬能”工具箱
CRISPR 結(jié)構(gòu)精巧靈活、可塑性極強(qiáng),不同 CRISPR 體系具有多種功用,接下來我們選取其中使用較為廣泛的三類進(jìn)行介紹。
①基因敲除
基因敲除是 CRISPR 最主要的應(yīng)用之一,真核細(xì)胞中普遍使用 CRISPR-Cas9 系統(tǒng),由工程單導(dǎo) RNA(sgRNA)將 Cas9 核酸酶引導(dǎo)到目標(biāo)位點(diǎn),制造 DNA 雙鏈斷裂(DSB),由非同源末端連接(NHEJ)和同源定向修復(fù)(HDR)等內(nèi)源性修復(fù)途徑修復(fù)。
這種技術(shù)已經(jīng)廣泛應(yīng)用于基因敲除動(dòng)物模型的創(chuàng)建,由于繞過了傳統(tǒng)手段的復(fù)雜胚胎干細(xì)胞篩選過程,培育時(shí)間大大縮短,培育轉(zhuǎn)基因小鼠的時(shí)長(zhǎng)從 1 年縮短到了 4 周[7]。同時(shí),大多數(shù)哺乳動(dòng)物并沒有成熟的胚胎干細(xì)胞系,通過 CRISPR-Cas9 也能夠促進(jìn)新物種的動(dòng)物模型出現(xiàn)。
在生殖細(xì)胞編輯之外,CRISPR-Cas9 也可以用于體細(xì)胞編輯,這避免了部分基因全身敲除的致命影響,在特定場(chǎng)景下也更有利于模擬癌癥的演變和進(jìn)展以及確定癌癥治療的新策略[8]。
利用 CRISPR,研究者已經(jīng)制造了多種疾病的動(dòng)物模型,包括酪氨酸血癥、杜氏肌營(yíng)養(yǎng)不良、癌癥、骨質(zhì)疏松、亨廷頓舞蹈癥、肌萎縮型側(cè)索硬化癥、阿爾茨海默病和艾滋病等[9]。
CRISPR 敲除和 CRISPR 篩選的流程
圖3 CRISPR 敲除和 CRISPR 篩選的流程
② CRISPR 篩選
當(dāng)通過 CRISPR 并行執(zhí)行針對(duì)多個(gè)基因的遺傳改變,就是 CRISPR 篩選。由于靈活高效,CRISPR 可以方便地引入基因擾動(dòng),可以深入研究單個(gè)基因擾動(dòng)如何影響目標(biāo)細(xì)胞的功能,又或是在混合篩選中對(duì)數(shù)千個(gè)擾動(dòng)進(jìn)行高通量測(cè)序[10]。當(dāng) gRNA 文庫(kù)達(dá)到基因組規(guī)模,研究者可以輕易使用 CRISPR 來擾動(dòng)人類基因組中的每一個(gè)基因[11]。
在 CRISPR 敲除(CRISPR KO)篩選之外,CRISPR 干擾(CRISPRi)篩選和 CRISPR 激活(CRISPRa)篩選也是常用的可逆的控制基因表達(dá)的篩選方法[12];飽和基因組編輯(saturation genome editing)能夠產(chǎn)生所有可能的單核苷酸多態(tài)性(SNPs)用于功能篩選[13];后文會(huì)介紹的單堿基編輯技術(shù)能夠以更高效率引入點(diǎn)突變,或許會(huì)成為 CRISPR 篩選的新助力。
CRISPR 篩選已經(jīng)在類器官、動(dòng)物、植物等復(fù)雜模型中實(shí)際應(yīng)用,它目前是分析癌基因功能的常用方法,還可以用于識(shí)別各種癌癥驅(qū)動(dòng)因素和調(diào)節(jié)因素[10]。
結(jié)合其他技術(shù),CRISPR 篩選同樣可用于細(xì)胞表型篩選、腫瘤耐藥性篩選等等領(lǐng)域,比如 Procode、Perturb-ATAC、Perturb-seq 和 ECCITE-seq 等多組學(xué)篩選技術(shù)。
③單堿基編輯技術(shù)
單堿基編輯技術(shù)提供了一種在不切斷 DNA 雙鏈的情況下進(jìn)行基因編輯的新可能,這一方面可以產(chǎn)生精確的點(diǎn)突變,一方面無需復(fù)制模板且限制了多余的副產(chǎn)物。
單堿基編輯系統(tǒng)通常由不具有催化 DSB 活性的 dCas9、dCas12a、dCas13b 等 Cas 蛋白和堿基脫氨酶融合組成,sgRNA 將融合酶引導(dǎo)到目標(biāo)位點(diǎn),脫氨酶進(jìn)行化學(xué)修飾,通過細(xì)胞修復(fù)機(jī)制處理堿基不匹配。在過去的幾年里,DNA 和 RNA 單堿基編輯已經(jīng)實(shí)現(xiàn)了 C>T、A>G、C>G、A>I和C>U 轉(zhuǎn)換突變。
點(diǎn)突變是人類致病遺傳變異的主要類別,單堿基編輯技術(shù)為治療人類遺傳疾病鋪平了道路。單堿基編輯已經(jīng)在多種小鼠模型中表現(xiàn)出了糾正功能喪失突變的良好效果,例如體內(nèi)單堿基編輯糾正小鼠 Hutchinson-Gilford 早衰綜合征[14]。使用單堿基編輯技術(shù)治療家族性高膽固醇血癥的早期臨床試驗(yàn)已經(jīng)開始,近期將開展的還有針對(duì)鐮狀細(xì)胞病的臨床研究[15]。
單堿基編輯技術(shù)之一base-editing的原理
圖4 單堿基編輯技術(shù)之一base-editing的原理
CRISPR 進(jìn)化的方向
隨著 CRISPR 基因編輯技術(shù)進(jìn)入下一個(gè)十年,還有一些關(guān)鍵的問題需要解決,其中一個(gè)就是編輯的精度。這既指編輯目標(biāo)位點(diǎn)的特異性,也指編輯結(jié)果的準(zhǔn)確性。
為減少意外結(jié)合和切割導(dǎo)致的脫靶效應(yīng),研究者利用合理的設(shè)計(jì)開發(fā)了高保真Cas變體,例如SpCas9-HF1、evoCas9、HiFiCas9和 Cas9_R63A/Q768A 等變體,亦或是設(shè)計(jì)了優(yōu)化的導(dǎo)向方法,例如 E-Crisp、CasOFFinder、sgDesigner。近期,也有研究開發(fā)了機(jī)器學(xué)習(xí)工具來預(yù)測(cè)基因編輯結(jié)果,但目前尚未得到體內(nèi)研究的驗(yàn)證[16]。
基因編輯特異性和準(zhǔn)確性
圖5 基因編輯特異性和準(zhǔn)確性
傳統(tǒng)編輯中,DSB 后涉及 NHEJ 或 HDR 通路的修復(fù)(前者容易出錯(cuò),可能導(dǎo)致突變,后者雖更精確,但發(fā)生率非常低),這會(huì)導(dǎo)致一系列插入缺失突變(indels)。避免這個(gè)問題的其中一個(gè)思路就是提高 HDR 效率和/或抑制NHEJ,例如使用單鏈寡脫氧核苷酸模板[17]、通過控制細(xì)胞周期階段來促進(jìn) HDR [18]、使用位點(diǎn)特異性 Cas9 寡核苷酸偶聯(lián)物將 DNA 模板募集到目標(biāo)位點(diǎn)[19]。但在這些方法之下仍存在 DSB 相關(guān)的大量基因位點(diǎn)缺失和染色體重排風(fēng)險(xiǎn),可能導(dǎo)致基因組不穩(wěn)定。
避免產(chǎn)生DSB則是另一個(gè)思路,堿基編輯(base editing,BE)和引導(dǎo)編輯(prime editing,PE)是目前的主要方法。不過 BE 也存在旁觀者編輯的問題,當(dāng)編輯窗口中存在多個(gè)目標(biāo)堿基時(shí),BE 的編輯精度會(huì)大大降低[20]。Cas 蛋白識(shí)別特定原間隔序列鄰近基序(PAM),受此限制,縮小編輯窗口也存在一定困難,這還需要結(jié)合多種輔助策略來改善。PE 同樣不涉及 DSB,且能夠?qū)崿F(xiàn) DNA 序列的插入,但目前 PE 的編輯效率還比較低[21]。
引導(dǎo)編輯的原理
圖6 引導(dǎo)編輯的原理
限制 CRIPSR 應(yīng)用的另一個(gè)環(huán)節(jié)是 CRISPR 的遞送。目前在哺乳動(dòng)物系統(tǒng)中存在多種遞送方法,可以大致分為物理遞送、病毒遞送和基于合成材料的遞送。常用的物理方法包括微注射和電穿孔,傳遞效率高且劑量可控,但這局限于體外遞送;病毒遞送常用腺相關(guān)病毒(AAV)、腺病毒(AdVs)和慢病毒等載體,其中 AAV 在臨床研究中應(yīng)用較多,但病毒載體存在載量、免疫原性、制造成本等多種潛在問題;脂質(zhì)納米顆粒(LNPs)、陽離子聚合物、多肽和納米金(gold nanoparticles,GNPs)等合成材料載體通常較為安全可控,LNPs 是首次成功用于治療TTR淀粉樣變性的遞送載體[22]。
體內(nèi)環(huán)境對(duì) CRISPR 遞送具有多種阻礙,載體需避免降解、調(diào)理素作用、吞噬導(dǎo)致從血管滲出,有效穿過狹窄間隙,并在內(nèi)吞時(shí)釋放內(nèi)含物。CRISPR 治療人類疾病能夠發(fā)展到何種程度,很大程度上將取決于當(dāng)前遞送方法的改進(jìn)、新遞送方法的創(chuàng)建和設(shè)計(jì)更緊湊的 CRISPR 編輯系統(tǒng)。
CRISPR 遞送過程
圖7 CRISPR 遞送過程
結(jié)語
可編程基因編輯技術(shù)的出現(xiàn)為細(xì)胞和基因治療的應(yīng)用鋪平了道路。已有大量應(yīng)用 CRISPR 的臨床試驗(yàn)正在進(jìn)行,其中關(guān)于 SCD 的至少已有 8 項(xiàng)正在進(jìn)行或即將開始,預(yù)計(jì) 2023 年內(nèi) FDA 會(huì)啟動(dòng)至少一項(xiàng)療法的批準(zhǔn)[23]。隨著臨床應(yīng)用的擴(kuò)大,CRISPR 也有可能成為預(yù)防神經(jīng)退行性疾病和心血管疾病的一種手段[24]。
CIRSPR 也對(duì)農(nóng)業(yè)和畜牧業(yè)產(chǎn)生了深遠(yuǎn)的影響,CRISPR 編輯的食品已經(jīng)進(jìn)入市場(chǎng),包括營(yíng)養(yǎng)價(jià)值更高的番茄和兩種已獲批在日本銷售的魚類。CRISPR 精準(zhǔn)編輯的特點(diǎn)非常適合定向育種,可以同時(shí)敲除和激活不同的基因,例如給小麥引入抗病性的同時(shí)增加小麥的產(chǎn)量[25]。
CRISPR-Cas9 和 CRISPR-Cas12a 是目前應(yīng)用最廣的編輯系統(tǒng),已經(jīng)在全世界各地的實(shí)驗(yàn)室得到了廣泛的應(yīng)用。這加速了基礎(chǔ)研究的進(jìn)展,也倒推了 CRISPR 工具箱的擴(kuò)展。結(jié)合機(jī)器學(xué)習(xí)、活細(xì)胞成像、DNA 測(cè)序技術(shù), CRISPR 還能做到更多。
下一個(gè)十年,CIRSPR 還將繼續(xù)改變世界。
未來的 CRISPR
圖8 未來的 CRISPR
參考資料:
[1] Wang J Y, Doudna J A. CRISPR technology: A decade of genome editing is only the beginning[J]. Science, 2023, 379(6629): eadd8643.
[2] Y. Ishino, H. Shinagawa, K. Makino, M. Amemura, A. Nakata,Nucleotide sequence of the iap gene, responsible for alkaline phosphatase isozyme conversion in Escherichia coli, and identification of the gene product. J. Bacteriol. 169,5429–5433 (1987). doi: 10.1128/jb.169.12.5429-5433.1987;pmid: 3316184
[3] F. J. M. Mojica, C. Díez-Villase?or, J. García-Martínez, E. Soria,Intervening sequences of regularly spaced prokaryotic repeats derive from foreign genetic elements. J. Mol. Evol.60, 174–182 (2005). doi: 10.1007/s00239-004-0046-3;pmid: 15791728
[4] S. J. J. Brouns et al., Small CRISPR RNAs guide antiviral defense in prokaryotes. Science 321, 960–964 (2008).doi: 10.1126/science.1159689; pmid: 18703739
[5] L. S. Qi et al., Repurposing CRISPR as an RNA-guided platform for sequence-specific control of gene expression.Cell 152, 1173–1183 (2013). doi: 10.1016/j.cell.2013.02.022;pmid: 23452860
[6] J. Y. Wang, P. Pausch, J. A. Doudna, Structural biology of CRISPR-Cas immunity and genome editing enzymes.Nat. Rev. Microbiol. 20, 641–656 (2022). doi: 10.1038/s41579-022-00739-4; pmid: 35562427
[7] H. Yang, H. Wang, R. Jaenisch, Generating genetically modified mice using CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Nat. Protoc. 9, 1956–1968 (2014). doi: 10.1038/nprot.2014.134; pmid: 25058643
[8] H. Mou, Z. Kennedy, D. G. Anderson, H. Yin, W. Xue, Precision cancer mouse models through genome editing with CRISPRCas9. Genome Med. 7, 53 (2015). doi: 10.1186/s13073-015-0178-7; pmid: 26060510
[9] H. Lee, D. E. Yoon, K. Kim, Genome editing methods in animal models. Anim. Cells Syst. 24, 8–16 (2020). doi: 10.1080/19768354.2020.1726462; pmid: 32158611
[10] A. Katti, B. J. Diaz, C. M. Caragine, N. E. Sanjana, L. E. Dow,CRISPR in cancer biology and therapy. Nat. Rev. Cancer 22,259–279 (2022). doi: 10.1038/s41568-022-00441-w;pmid: 35194172
[11] N. E. Sanjana, O. Shalem, F. Zhang, Improved vectors and genome-wide libraries for CRISPR screening. Nat.Methods 11, 783–784 (2014). doi: 10.1038/nmeth.3047;pmid: 25075903
[12] L. Przybyla, L. A. Gilbert, A new era in functional genomics screens. Nat. Rev. Genet. 23, 89–103 (2022). doi: 10.1038/s41576-021-00409-w; pmid: 34545248
[13] G. M. Findlay et al., Accurate classification of BRCA1 variants with saturation genome editing. Nature 562, 217–222 (2018).doi: 10.1038/s41586-018-0461-z; pmid: 30209399
[14] L. W. Koblan et al., In vivo base editing rescues Hutchinson-Gilford progeria syndrome in mice. Nature 589, 608–614 (2021). doi: 10.1038/s41586-020-03086-7;pmid: 33408413
[15] K. Kingwell, Base editors hit the clinic. Nat. Rev. Drug Discov.21, 545–547 (2022). doi: 10.1038/d41573-022-00124-z;pmid: 35831515
[16] W. Chen et al., Massively parallel profiling and predictive modeling of the outcomes of CRISPR/Cas9-mediated doublestrand break repair. Nucleic Acids Res. 47, 7989–8003(2019). doi: 10.1093/nar/gkz487; pmid: 31165867
[17] C. D. Richardson, G. J. Ray, M. A. DeWitt, G. L. Curie,J. E. Corn, Enhancing homology-directed genome editing by catalytically active and inactive CRISPR-Cas9 using asymmetric donor DNA. Nat. Biotechnol. 34, 339–344(2016). doi: 10.1038/nbt.3481; pmid: 26789497
[18] A. Lomova et al., Improving gene editing outcomes in human hematopoietic stem and progenitor cells by temporal control of DNA repair. Stem Cells 37, 284–294 (2019).doi: 10.1002/stem.2935; pmid: 30372555
[19] X. Ling et al., Improving the efficiency of precise genome editing with site-specific Cas9-oligonucleotide conjugates.Sci. Adv. 6, eaaz0051 (2020). doi: 10.1126/sciadv.aaz0051;pmid: 32494588
[20] M. Arbab et al., Determinants of base editing outcomes from target library analysis and machine learning. Cell 182, 463–480.e30 (2020). doi: 10.1016/j.cell.2020.05.037; pmid: 32533916
[21]M. M. Hassan, G. Yuan, J.-G. Chen, G. A. Tuskan, X. Yang,Prime editing technology and its prospects for future applications in plant biology research. BioDesign Research 2020, 1–14 (2020). doi: 10.34133/2020/9350905
[22] J. D. Gillmore et al., CRISPR-Cas9 In vivo gene editing for transthyretin amyloidosis. N. Engl. J. Med. 385, 493–502(2021). doi: 10.1056/NEJMoa2107454; pmid: 34215024
[23] F. D. Urnov, The Cas9 hammer-and sickle: A challenge for genome editors. CRISPR J. 4, 6–13 (2021). doi: 10.1089/crispr.2021.29120.fur; pmid: 33616446
[24] K. Musunuru et al., In vivo CRISPR base editing of PCSK9 durably lowers cholesterol in primates. Nature 593,429–434 (2021). doi: 10.1038/s41586-021-03534-y;pmid: 34012082
[25] S. Li et al., Genome-edited powdery mildew resistance in wheat without growth penalties. Nature 602, 455–460(2022). doi: 10.1038/s41586-022-04395-9;pmid: 35140403